Практические рекомендации
Для оценки функционального состояния организма доноров в период их отбора для иммунизации, в процессе введения антигена и повторных плазмаферезов следует применять комплекс информативных лабораторных тестов, предусматривающий исследование гематологических (состав периферической крови), биохимических (билирубин, АлАТ, общий белок, тимоловая проба) и иммунологических показателей (титр специфических антител, Hbs-антиген) с использованием унифицированных методов их определения и Международной системы измерений (СИ).
В процессе наблюдения за иммунизированными донорами необходимо учитывать количественные критерии и сроки выявления допустимых временных отклонений от референтных величин ряда функциональных тестов.
Пределы отклонений определяются следующими показателями периферической крови: эозинофилы до 6% (1 — 4 нед), палочкоядерные нейтрофилы до 8% (1 — 4 нед), моноциты до 12% (1 — 6 нед), плазматические клетки до 1% (1 — 6нед); показателями функции печени: билирубин общий до 20,5 мкмоль/л (1 — 4 нед), АсАТ до 0,68 ммоль/(ч-л) и АлАТ до 1,36 ммоль/(ч*л) (1 — 4 нед), тимоловая проба до 5,5 ед (1 — 4 нед), белок общий до 90 г/л (1 — 4 нед) и у-глобулины до 21 г/л (1 — 6 нед) при условии отрицательной реакции на Hbs-антиген и отсутствии клинических признаков какого-либо заболевания.
В целях профилактики развития клинических реакций и осложнений следует исключить из программы получения гипериммунной плазмы доноров, у которых обнаруживаются отклонения функциональных тестов от нормы, превышающие допустимые временные сдвиги в установленные сроки наблюдений.
В таких случаях необходимо проводить дополнительное обследование донора и наблюдение за ним до нормализации функциональных показателей. Вопрос о дальнейшем донорстве решается индивидуально в каждом конкретном случае.
Для своевременного отвода доноров от плазмафереза, предусматривающего получение гипериммунной плазмы, следует руководствоваться количественными критериями оценки иммунологической активности сыворотки крови: содержание а-антистафилотоксина менее 5-103 МЕ/л при иммунизации СА; содержание мертвых клеток в лимфоцитотоксической пробе менее 60% при иммунизации аллогенными лейкоцитами и тромбоцитами и снижение протективной активности (PD50) сыворотки до исходных величин при иммунизации эшерихиозными вакцинами.
Подбор доноров для иммунизации СА целесообразно осуществлять с учетом ряда общих и индивидуальных факторов, оказывающих определенное влияние на процесс иммуногенеза. Наибольшее количество а-антистафилотоксина вырабатывается у доноров-мужчин в возрасте 31 — 40 лет, у лиц рабочих профессий и у доноров, длительно сдающих кровь и плазму. Степень иммунного ответа определяется также и антигенностью производственных серий СА.
В целях внедрения в практику единых оптимальных для организма методов иммунизации здоровых людей и унифицированной системы медицинского контроля за состоянием здоровья доноров в процессе получения гипериммунной плазмы учреждениям, заготавливающим иммуноактивные препараты, рекомендуется руководствоваться разработанными и утвержденными МЗ СССР инструктивно-методическими пособиями по данному вопросу.
«Функциональные системы организма доноров
гипериммунной плазмы», Н.В. Демидова
- Данные литературы и наши исследования
- Клинические наблюдения и лабораторные исследования через 8 лет и более после иммунизации
- Применение многообразного спектра функциональных тестов
- Применение НСА
- Высокая эффективность иммунных препаратов
- Семиотика поствакцинальной субклинической реакции
- Ретроспективный анализ
- Сравнительная оценка диагностической значимости исследуемых показателей и частоты их отклонения от нормы
- Стереотипная закономерность проявления функциональных сдвигов у иммунизированных лиц
- Профилактика развития клинических поствакцинальных реакций
- Вопрос о механизме развития реакции организма у иммунизированных доноров
- Отсутствие цитолиза гепатоцитов в период антителообразования
